STRATEGIE REPLIKACJI GENOMÓW WIRUSOWYCH

Slides:



Advertisements
Podobne prezentacje
Chemioterapia Wytyczne i zasady stosowania
Advertisements

Replikacja, naprawa i rekombinacja DNA u eukariontów
Wykład 6 3. Kwasy nukleinowe - budowa i funkcje
Struktura i replikacja
Małgorzata Gozdecka Dominika Rudnicka
GENOMIKA FUNKCJONALNA U ROŚLIN
Polimerazy RNA zależne od RNA, wirusy i wyciszanie RNA
Materiały pochodzą z Platformy Edukacyjnej Portalu
RNA i transkrypcja u eukariontów
WIRUSY.
Kwasy nukleinowe jako leki
Kwasy nukleinowe jako leki
Próba syntezy multimerycznej formy aktywnego analogu lamininy YIGSR
„Oocyte-specific expression of Gpr3 is required for maintenance of meiotic arrest in mouse oocytes.” Lisa M.Mehlmann „Ekspresja Gpr3 w oocycie jest wymagana.
Uniwersytet Warszawski
Uniwersytet Warszawski
Uniwersytet Warszawski
DZIEDZICZENIE POZAJĄDROWE
Fazy rozwoju pęcherzyka jajnikowego
1 grudzień – Światowy Dzień Walki z AIDS prezentację przygotowała: Klaudia Michalczyszyn z klasy 1c LO Jelenia Góra r.
Wirusy Maciej Dajos kl. I „b”.
Podział komórki:.
The functional organization of mitochondrial genomes in human cells
Geny i genomy Biologia.
Piotr Rybiński. 1. Wstęp 2. Opis systemu i narzędzi 3. Algorytm 4. Przykłady działania 5. Porównanie z rzeczywistym systemem rozwoju 6. Rozszerzenia systemu,
PODZIAŁ KOMÓRKI ROŚLINNEJ - MITOZA
WITAM PO WAKACJACH ŻYCZĘ POWODZENIA W STUDIOWANIU MEDYCYNY
Regulacja acetylacji histonu H4, podczas dojrzewania mejotycznego, w oocytach myszy
Podsumowanie – wykład 3 1. Technologia DNA
Wiadomości ogólne o komórkach i tkankach
Mitoza i mejoza mgr Ilona Marciniak.
Podsumowanie - wykład 2 Struktura kwasów nukleinowych ( DNA i RNA)
Endogenna transkrypcja zachodzi w 1-komórkowym zarodku myszy
TRANSFORMACJA KOMÓRKI
STRATEGIE REPLIKACJI GENOMÓW WIRUSOWYCH
ENZYMY.
Kryteria klasyfikacji wirusów
Komórki i ich różnicowanie
Podstawowy dogmat biologii
Biologia komórki. Wykład 4
POLIMERAZY RNA Biorą udział w syntezie RNA na matrycy DNA- transkrypcji Początek i koniec transkrypcji regulują sekwencje DNA i wiążące się do nich białka.
Regulacja ekspresji genu
Interferencja RNA (RNAi, RNA interference)
Treści multimedialne - kodowanie, przetwarzanie, prezentacja Odtwarzanie treści multimedialnych Andrzej Majkowski informatyka +
Komórka Ela Witaszek.
Tworzenie konstruktów ekspresyjnych siRNA. Metody wprowadzania siRNA siRNA Vector [DNA]
Struktura i funkcja chromatyny
Znaczenie końca 3’ mRNA w regulacji translacji – rola białka CPEB
Miejsca fosforylacji in vivo laminy Dm z D. melanogaster
Treści multimedialne - kodowanie, przetwarzanie, prezentacja Odtwarzanie treści multimedialnych Andrzej Majkowski informatyka +
Podział komórki:.
Od DNA do białka.
PRZEGLĄD SYSTEMATYCZNY WIRUSÓW
(acquired immune deficiency syndrome)
CZYNNIKI DETERMINUJĄCE ZAKAŻENIA WIRUSOWE
forma pośrednia między materią ożywioną, a nieożywioną
Zmiany w informacji genetycznej
Zakażenie produktywne – ogólny schemat replikacji wirusów kręgowców.
2.22. Procesy i zasady kodowania informacji genetycznej
Wykłady z wirusologii weterynaryjnej ułożone zostały tematycznie i zawierają minimum informacji jaką powinni przyswoić przyszli lekarze weterynarii. Przykłady.
1.22. Odczytywanie informacji genetycznej – przepis na białko
Podział hormonów 1. Budowa strukturalna Peptydy i białka
Replikacja, naprawa i rekombinacja DNA u eukariontów
Informacja komórki krótka wersja
mitoza i mejoza; cykl komórkowy;
Informacja komórki.
Cykl komórkowy w prawidłowym procesie rozwoju
Biosynteza białka-translacja
Białka wiążące penicylinę (ang. Penicillin Binding Proteins, PBP)
Zapis prezentacji:

STRATEGIE REPLIKACJI GENOMÓW WIRUSOWYCH „Be warned! One sneeze can generate an aerosol of enough cold viruses to infect an entire regiment!” Linda Stannard

dsDNA Prokaryotae Eukaryotae Archaebacteria Eocyta Eubacteria Archaezoa Photocyta Chromista Plantae Animalia dsDNA

Wirusy RNA DNA ssRNA(+) dsDNA ssRNA(-) ssDNA dsRNA dsDNA RT ssRNA(+)RT Astroviridae Caliciviridae Picornaviridae Coronaviridae Arteriviridae Flaviviridae Togaviridae Asfaviridae Herpesviridae Iridoviridae Poxviridae Adenoviridae Papillomaviridae Polyomaviridae dsDNA ssRNA(-) Filoviridae Paramyxoviridae Rhabdoviridae Bornaviridae Rząd: Mononegavirales Circoviridae Parvoviridae ssDNA Arenaviridae Bunyaviridae Orthomyxoviridae dsRNA Birnaviridae Reoviridae Hepadnaviridae dsDNA RT ssRNA(+)RT Retroviridae

wirusy DNA (ds, ss)

Podział procesu replikacji wirusów kręgowców na okresy, fazy i stadia 1. Okres adsorbcji 2. Okres penetracji i obnażania genomu 3. Okres wewnątrzkomórkowej biosyntezy fazy

a. zahamowanie syntezy komórkowego DNA, RNA i białek - początek fazy eklipsy i początek stadium latencji b. transkrypcja, translacja i synteza białek wczesnych c. replikacja kwasu nukleinowego dla wirionów potomnych d. transkrypcja z rodzicielskiego i/lub potomnego DNA (względnie RNA) oraz translacja i synteza białek późnych i ew. późnych enzymów e. montowanie wirionów potomnych - koniec fazy eklipsy 4. Okres dojrzewania i uwalniania wirionów potomnych - koniec stadium latencji

Rodzina: Herpesviridae Podrodzina: Alphaherpesvirinae Simplexvirus Varicellovirus Podrodzina: Betaherpesvirinae Cytomegalovirus Muromegalovirus Roseolovirus Podrodzina: Gammaherpesvirinae Lymphocryptovirus Rhadinovirus

100-200 nm, dwudziestościenny kapsyd i otoczka zawierająca amorficzny tegument; otoczka powstaje podczas wypączkowywania z jądra dsDNA 124-235 kbp, 4 klasy genomu, zależnie od aranżacji tzw. sekwencji powtarzających się 70 do ponad 200 ORF, w tym dla DNA-polimerazy, białek wiążących DNA, proteazy, TK, RRA, kinaz i innych 3 klasy genów - natychmiastowe wczesne (alfa, indukowane przez α-TIF), wczesne i późne

1 2 EHV-1 BoHV-1 SuHV-1 3 4 HHV-1 UL TRL IRL IRS TRS US

ekspresja genów kaskadowa - geny α ulegają ekspresji jako pierwsze i aktywują ekspresję pozostałych genów α zwierają docelowy element TAATGArATT i indukowane są przez α-TIF obecny w tegumencie β - RRA, TK, DNA-polimeraza, białko wiążące DNA i in. odpowiedzialne za replikację DNA γ - strukturalne

nukleokapsydy transportowane do jądra przy udziale mikrotubul cytoszkieletu genom zawiera 3 miejsca ori w których rozpoczyna się replikacja: 2oriS - umożliwia syntezę dwukierunkową oriL - jednokierunkową L i jedno S mogą być usunięte bez utraty zdolności do replikacji

Replikacja kwasu nukleinowego dla wirionów potomnych rozpoczyna się w jednym (lub więcej) miejscu ori, zgodnie z mechanizmem „toczącego się koła” (rolling circle) i przebiega z wytworzeniem tzw, konkatameru - formy pośredniej złożonej z więcej niż jednego genomu Szczegóły znajdziesz TU

Rodzina: Poxviridae Podrodzina: Chordopoxvirinae Podrodzina: Entomopoxvirinae

Podrodzina: Chordopoxvirinae Orthopoxvirus (ospy i krowianki) Parapoxvirus (orf i inne) Avipoxvirus (ospy ptaków) Capripoxvirus (ospy kóz) Leporipoxvirus (myksomatozy i fibromatozy) Suipoxvirus (ospy świń) Molluscipoxvirus (mięczaka zakaźnego) Yatapoxvirus (wirusy Tana i Yaba)

dsDNA 130-375 kbp, 150-300 białek, w tym DNA-zależna DNA-transkryptaza, (Ortho - HA); ok. 100 białek obecnych w wirionie wczesne transkrypty poli-A powstają wewnątrz rdzenia, przed obnażeniem DNA kodują liczne enzymy, w tym DNA-zależną DNA-polimerazę, enzymy modyfikujące DNA i RNA, białka wyłączające syntezy komórkowe, czynniki transkrypcyjne genów pośrednich pośrednie - ekspresja podczas replikacji DNA, prawdopodobnie kodują czynniki transkrypcyjne genów późnych

Replikacja DNA w cytoplazmie (przy pomocy enzymów kodowanych przez wirus), z wytworzeniem pośredniej formy konkatamerycznej; nie wymaga miejsca ori

Rodzina: Adenoviridae Mastadenovirus Aviadenovirus

dsDNA 20-25x106 (Mast), 30x106 (Avi), ludzki a. 2 ok dsDNA 20-25x106 (Mast), 30x106 (Avi), ludzki a. 2 ok. 36 kbp z 1 sekwencja odwróconą Ok. 40 polipeptydów, wczesne wpływają modulująco na aparat transkrypcyjny komórki E1A - bierze udział w unieśmiertelnianiu komórek E1B - bierze udział w transformacji komórek, podobny do c-myc i c-fos E2A - białko wiążące ssDNA E2B - niezbędne do replikacji DNA

replikacja semikoserwatywna - elongacja nici potomnej w kierunku 5’ 3’ 2 typy replikacji: I - „liniowa” II - z wytworzeniem pośredniej formy kolistej

Rodzina: Iridoviridae Liniowy dsDNA 140-303 kbp; u IIV-1, wirusa bezkręgowców występuje w rdzeniu dodatkowy składnik 10.8 kbp 2 fazy replikacji - wczesna - w jądrze, produkt o wielkości genomu lub mniejszy może służyć jako dodatkowa matryca lub transportowany jest do cytoplazmy gdzie występuje w formie dużego, rozgałęzionego konkatameru późna - konkatamer jest rozdzielany na pojedyńcze genomy potomne przy udziale kodowanej przez wirus integrazy-rekombinazy

Najpierw tworzy się dupleks z jednoniciowymi końcami 3’, zdolnymi do rekombinacji w obrębie tej samej cząsteczki DNA (A) lub innych (B), przy udziale kodowanej przez wirus integrazy-rekombinazy; tworzą się duże, rozgałęzione konkatamery „replikacyjne” konkatamer „replikacyjny” rozdzielany jest na pojedyńcze genomy potomne przy udziale kodowanej przez wirus integrazy-rekombinazy Schemat replikacji i tworzenia konkatamerów znajdziesz na TEJ stronie

Rodzina: Asfarviridae Asfivirus dsDNA 170-190 kbp

70-100 nm rdzeń otoczony warstwą lipidową i dwudziestościennym kapsydem, średnica wraz z otoczką - 170-190 nm Warstwa lipidowa pochodzi z błon retikulum endoplazmatycznego, otoczka - z błony cytoplazmatycznej Replikacja DNA w przestrzeni okołojadrowej, z wytworzeniem pośredniej formy konkatamerycznej, konkatamer „head-to-head”

Rodzina: Polyomaviridae Rodzaj: Polyomavirus Nagie, 40 nm., kolisty dsDNA ok. 5 kbp genom podzielony na region wczesny i poźny, 1 ori E mRNA (T) i L mRNA (VP-1 do VP-3) transkrybowane z różnych nici

zakażenie produktywne dwuetapowe: zakażenie produktywne dwuetapowe: - etap wczesny - przed replikacją DNA - etap późny - po jej rozpoczęciu za adsorbcję wirionu do komórki odpowiada VP-1 aktywujący jednocześnie komórkowe geny c-myc i c-fos; wnikanie przez endocytozę, transport DNA do jądra wakuoli która ulega fuzji z błoną jądrową w etapie wczesnym ekspresji ulegają antygeny T co prowadzi do aktywacji ekspresji genów komórkowych i aktywacji syntezy komórkowego DNA replikację inicjuje duży antygen T - tworzy kompleks z czynnikami komórkowymi i przylącza się do wirusowego DNA w pobliżu ori

replikacja rozpoczyna się przyłączeniem dużego antygenu T (aktywność helikazy) do miejsca ori i jego oddziaływaniem z DNA-polimerazą gospodarza; przebiega w sposób „półnieciągły” - - dwukierunkowo; po osiągnięciu ok. 1800 od miejsca ori przechodzi w fazę późną - „rolling circle”

Rodzina: Papillomaviridae Rodzaj: Papillomavirus Nagie, 55 nm., kolisty dsDNA ok. 8 kbp 9-10 ORFs, E1-E8, L1 i L2, transkrybowane z tej samej nici (w odróżnieniu od Polyoma) E - odpowiedzialne za transkrypcję i replikację L - strukturalne 9-10 ORFs, E1-E8, L1 i L2, transkrybowane z tej samej nici (w odróżnieniu od Polyoma)

E2 - transaktywator stymulujący transkrypcję genów wirusowych przez współdziałanie z enhancerami obecnymi w LCR; ma zdolność przyłączania do określonych sekwencji DNA niektóre wczesne - np. E5, E7 - określane jako onkoproteiny działają tumorogennie 2 typy replikacji, zależnie od stopnia zróżnicowania komórek: - „plazmidowa” - raz na cykl podziału komórki - wegetatywna – w komórkach zróżnicowanycvh

w komórkach mało niezróznicowanych „wstępnie” zreplikowany genom szybko przechodzi w formę plazmidową pod wpływem działającego modulująco E1-M który „znakuje” nowopowstały DNA i wyłącza go z replikacji replikacja wegetatywna inicjowana jest w komórkach kolczystych przez wiązanie E1 (E1-R) i E2 do ori i interakcję z DNA-polimerazą komórkową białka E mają zdolność do derepresji niektórych genów komórkowych i stymulacji syntezy komórkowego DNA genom papillomawirusa może zintegrować się z genomem gospodarza, niekiedy w okolicy c-onc

2 typy replikacji: „plazmidowa” – w mniej zróżnicowanych komórkach naskórka - bezpośrednio po wniknięciu do komórki dochodzi do replikacji ograniczonej liczby genomów, które przechodzą w formę plazmidową – replikacja raz na cykl podziału komórki wegetatywna – w zróżnicowanych, łuskowatych komórkach naskórka, gdzie nie ma syntezy komórkowego DNA Schemat znajdziesz TU

„Wstępnie” zreplikowany genom szybko przechodzi w formę plazmidową pod wpływem działającego modulująco E1-M (mod), który „znakuje” nowopowstały DNA i wyłącza go z replikacji replikacja wegetatywna inicjowana jest przez wiązanie E1-R (rep) i E2 do ori i interakcję z DNA-polimerazą komórkową genom papillomawirusa może zintegrować się z genomem gospodarza, niekiedy w okolicy c-onc

Rodzina: Parvoviridae Parvovirinae Rodzaj: Parvovirus Erythrovirus Dependovirus Densovirinae Rodzaj: Densovirus Iteravirus Contravirus Nagie, dwudziestościenne, 18-26 nm. ssDNA, 4-6 kb, 2 główne geny - REP (kodujący funkcje niezbędne do transkrypcji i replikacji DNA) i CAP (kodujący niałka strukturalne); u niektórych członków rodziny występują dodatkowe ORFs

Enkapsydacji ulegają zarówno nici ssDNA „+” jak i „-”, z różną efektywnością Densovirus kodują REP i CAP na komplementarnych niciach Wirusy autonomiczne mają ssDNA „-” - komplementarny do mRNA dependowirusy - AAV - ssDNA”+” lub”-”, do replikacji wymagają zakażenia helperem - adeno lub herpes

dependowirusy - AAV - pod nieobecność helpera DNA dostaje się do jądra ale ekspresja genów jest niewystarczająca dla uruchomienia transkrypcji z pośredniej formy dwuniciowej i DNA ulega integracji Wirusy autonomiczne replikują DNA z wytworzeniem pośredniej formy „dimer-duplex” http://www.mcb.uct.ac.za/tutorial/parvrep2.gif